樣品收集細節 |
血漿樣品 | (1)用采血針和EDTA抗凝管抽取全血,輕柔上下顛倒混勻后室溫或者4°C保存,并在1小時內進行下一步處理; (2)4°C條件下,使用吊桶式轉頭1900g離心10min,小心吸取上清即為血漿,最后500μl左右丟棄。得到的血漿再次離心,條件為4°C,3000g,15min,小心吸出血漿,注意不要碰到底部和側面的沉淀物; (3)將血漿凍存于-80°C; 提示:送樣量最好4mL以上(分離4mL血漿約需要8-10mL全血)。 |
血清樣品 (有條件的話盡量采用血漿,避免血小板來源的外泌體影響) | (1)用采血針和普通血清管(不含任何試劑,10mL規格)采血10mL; (2)室溫靜置30min,然后4°C條件下,靜置3~4小時(此時可見血塊析出); (3)用移液器吸取上面的淡黃色血清(應該有4mL左右)轉入15mL離心管中,4°C條件下3000g離心15min,小心取上清轉入新的15mL離心管中,最大程度保證血清質量; (4)離心后的血清15分鐘內凍存于-80°C冰箱; 提示:送樣量最好4mL以上(分離4mL血清約需要10—15mL全血)。 |
細胞上清 (需采用去除外泌體的培養基) | (1)細胞在正常含有血清的培養基中培養一定時間,貼壁細胞密度在70%-80%,懸浮細胞密度在60%-70%; (2)對于貼壁細胞,去除原有培養基,換為新的不含外泌體的培養基或者無血清培養基;對于懸浮細胞,300g,4°C,10min收集細胞; (3)使用不含外泌體的培養基或者無血清培養基懸浮細胞并繼續培養。細胞繼續培養24-48小時,根據細胞的生長速度確定收取上清時間; (4)收集細胞上清,300g,4°C,離心10min;小心吸取上清,注意避免吸入細胞或者細胞碎片; (5)3000g,4°C,再次離心15min,確保將細胞或者細胞碎片去除干凈; (6)取上清,注意避免吸入細胞或者細胞碎片,合并相同的細胞培養液上清樣品,裝入無菌的玻璃瓶,可在4°C短期保存(1~2天),長期保存可凍存于-80°C。建議細胞上清分離后盡快進行外泌體分離,保存在4°C和-80°C,都會對產量有一定的影響; (7)寄送時液體不要灌太滿,防止結冰后體積膨脹泄露。 |
尿液 | (1)采集前/中后段晨尿,應該盡量選擇受試者的“新鮮”尿液100mL,并注意避免細菌污染,收集前注意對飲食的控制,于4℃臨時保存(不得超過8h); (2)并于3000×g離心15min,去除細胞或細胞碎片; (3)-80℃冰箱中保存。 |
腦脊液 | (1)收集腦脊液10mL,采集方式為腰椎穿刺,樣本一經分離,請務必立即置于冰上或4℃短暫保存(不得超過4h),避免受到血液污染,勿使用含肝素抗凝劑的采樣管收集盛放; (2)并于3000×g離心15min,去除細胞或細胞碎片; (3)-80℃冰箱中保存。 |
腹水 | (1)臨床收集腹水后若不能第一時間處理,請于4℃臨時保存(不得超過8h); (2)將采集到的腹水在4℃下(室溫亦可)離心2000g,20min,去除腹水中的殘渣; (3)-80℃冰箱中保存。 |
注意事項:
●已經提取好的外泌體檢測NTA、電鏡、wb時不一定要嚴格按照上述送樣體積,因為一般都是PBS溶解的,如果濃度高的樣本1μL就可以做NTA和電鏡,主要是看濃度;wb檢測時5μg就可以點一個孔。
●樣本發生溶血,則棄掉。
●樣本編號用油性筆清楚地寫在管壁及管蓋上。
●離心管在放入冰箱前,用封口膜密封。
●如果提供的是凍存細胞株,需提供詳盡的復蘇方法及培養基。
●細胞培養基去除血清中外泌體,可以考慮超離去除。
●分離外泌體前的樣品不能加入任何RNA保護劑(如Trizol)。
●分離好的外泌體如需進行電鏡觀察,需要放4°C保存,并且不宜保存太久。
●長時間保存的樣本以原液-80°C保存會比提取外泌體后保存更好。
●儲存條件以及儲存時間影響外泌體得率,保存在-80℃冰箱中的樣本,如果儲存時間過長,外泌體產量也會顯著降低。
●干冰運輸應采用壁厚且質量完好的泡沫箱,24小時到達的,干冰數量不得低于5公斤;48小時到達的,干冰數量不得低于8公斤;夏季適當增加干冰(1.5倍)。